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(Last modification: 20. Feb. 2009: Abbildungen, kleinere Änderungen im Text)

 

MPBD (4-Methyl-5-pentylbenzene-1,3-diol) Biosynthese in Dictyostelium discoideum

 

    Im Lebenszyklus der Amöbe Dictyostelium discoideum triggert Hunger einen komplizierten Differenzierungsprozess; in ihm aggregieren bis zu 100.000 Zellen zu einer multizellulären Masse, die in Richtung Licht und Wärme wandert. Differenzierungs-induzierende Faktoren (DIFs) spielen in diesem Prozess wichtige Rollen. Die Strukturen vieler Moleküle wurden aufgeklärt  (Morris et al., 1987; Morris et al., 1988; Kay et al., 1988; Traynor and Kay, 1991; Kay et al., 1993; Takaya et al., 2000; Maeda et al., 2003; Arai et al., 2005; Serafimidis and Kay, 2005; Saito et al., 2006). Die Strukturen von DIF-1 und anderer vermutlich über PKS-Reaktionen gebildete Signalmoleküle sind in Fig. 1 dargestellt.

 

 

Fig. 1.
Morphogenetische Faktoren in Dictyostelium discoideum, bei deren Biosynthese eine Polyketidsynthase vermutet wurde. 

 

   Für DIF-1 wurde bald vorgeschlagen, dass die Schlüsselreaktion der Biosynthese eine Polyketidsynthase (PKS) sein sollte (Kay, 1998), ein Enzym, welches funktionell gerade so wie eine Chalconsynthase (CHS) arbeitete, aber mit Hexanoyl-CoA anstelle von 4-Coumaroyl-CoA als Substrat (das sollten Sie sich auch ansehen: Austin et al., 2006mehr...). Bei MPBD (4-Methyl-5-pentylbenzene-1,3-diol) liess sich aus dem Hydroxylierungsmuster am aromatischen Ring vermuten, dass eine Stilbensynthase (STS)-Typ Reaktion beteiligt sein könnte, aber ungeklärt war der Ursprung einer Methylgruppe am aromatischen Ringsystem. Diese PKS und ein Modell der Biosynthese wird hier diskutiert:

   Diese Seite beschäftigt sich mit einer Dictyostelium discoideum Typ III PKS, die in vivo wahrscheinlich eine ungewöhnliche Reaktion durchführt: Zwei Kondensationsreaktionen mit einem Substrat, welches bereits eine ß-Ketogruppe enthält, und danach eine Stilbensynthase (STS)-Typ Ringfaltung.

Schlüsselpublikation: Ghosh et al., 2008

    Diese Autoren begannen ebenfalls mit einem bioinformatischen Ansatz, mit der Verfügbarkeit des D. discoideum Genomprojektes (Eichinger et al., 2005). Sie identifizierten 45 Polyketidsynthasen des Multidomän-Typs mit >2000 Aminosäuren, und nannten sie DiPKS1 bis DiPKS45. Darunter waren natürlich auch die früher (Austin et al., 2006, mehr...) identifizierten Steely1 (= DiPKS1) und Steely2 (= DiPKS37). Ganz sicher wird diese duplikate Terminologie in Zukunft einige Verwirrung stiften, wie so häufig. Auf dieser Seite werde ich deshalb beide Namen zusammen verwenden. Wie früher berichtet, waren dies die einzigen mit einer Typ III PKS Domäne, und der grundsätzliche Aufbau der Gene für die Polyproteine soll hier nicht wiederholt werden.
    Die Autoren führten dann funktionelle Untersuchungen durch, nach Expression der Typ III Domänen in E. coli. Die Ergebnisse mit DiPKS37 (Steely2) bestätigten die früheren Daten (Austin et al., 2006): Es führte eine CHS-Typ Reaktion mit Hexanoyl-CoA durch. Das wirklich Interessante ergab sich bei DiPKS1 (Steely1): Im Gegensatz zu den früheren Ergebnissen wurde jetzt gefunden, dass es nicht nur Pyrone synthetisierte (zwei Kondensationen, Triketid-Pyrone), sondern auch ein Resorcinol-Typ Produkt, also: Steely1 (DiPKS1) führte drei Kondensationen durch, gefolgt von einer Stilbensynthase (STS)-Typ Ringfaltung, siehe Fig. 2. Interessanterweise ist das Produkt von Hexanoyl-CoA -> Olivetol; dies ist auch das in vitro Produkt einer PKS-Aktivität in Rohextrakten aus  Hanf (Cannabis sativa); allerdings sollte das Produkt des Enzyms in der Biosynthese der Droge Tetrahydrocannabinol nicht Olivetol sein, sondern die carboxylierte Form (Olivetolsäure): mehr...

 

 

Fig. 2.
Ghosh et al. (2008): Biosynthese morphogenetischer Faktoren in Dictyostelium discoideum:
Das neue Ergebnis ist, dass DiPKS1 (Steely1) drei Kondensationen und eine Stilbensynthase (STS) Typ Ringfaltung durchführen kann. Das Acylphloroglucinol ist die Vorstufe zu dem Differenzierungsfaktor DIF-1: mehr...

Definitions:
DiPKS37 = Steely2 (biosynthesis of DIF-1): three condensations, CHS-type ring-folding;
DiPKS1 = Steely1 synthesizes two products in vitro: 5-pentylbenzene-1,3-diol (three condensations, STS-type ring-folding), and a triketide pyrone (two condensations).

 

    Experimente mit anderen Substraten zeigten, dass Resorcinol-Typ  Produkte nicht nur mit Hexanoyl-CoA, sondern auch mit Octanoyl-CoA und Decanoyl-CoA erhalten wurden; längerkettige Substrate führten jedoch nur zu Pyronen. Interessant war auch das Ergebnis mit einem Konstrukt, welches zusätzlich zu der Typ III PKS-Domäne auch die davorliegende ACP-Domäne enthielt: Die Produkte waren fast ausschliesslich die Resorcinole, ein deutlicher Hinweis, dass die Gesamtstruktur des Proteins ein wichtiger Faktor in der Produkt-Spezifität ist.
  
Das war natürlich ganz spannend, denn daraus ergaben sich Ideen für die Biosynthese von MPBD (4-Methyl-5-Pentylbenzene-1,3-Diol), welches ein Resorcinol-Ringsystem enthält (Fig. 1). In der Publikation gibt es noch mehr interessante Befunde und Diskussionen, aber hier werde ich mich nur auf das Modell konzentrieren, welches für die Biosynthese von MPBD vorgeschlagen wird, wobei natürlich der Mechanismus für die Einführung der Methylgruppe am aromatischen Ring besonders interessant ist. Fig. 3 ist eine Zusammenfassung des Modells, und sie enthält auch einen Vergleich der Reaktionen von DiPKS1 (Steely1) mit denen von DiPKS37 (Steely2) in der Biosynthese von DIF-1.
  
Einige der anderen Punkte von Interesse bei diesen ungewöhnlichen PKS wurden bereits auf einer anderen Seite besprochen, und wahrscheinlich lohnt sich ein Blick: Mehr...
 

 

Fig. 3.
Ghosh et al. (2008): Modelle für die Biosynthese morphogenetischer Faktoren in Dictyostelium discoideum.
DiPKS1 (Steely1): Der Multidomän-Teil der PKS führt mit Acetyl-CoA zwei vollständige Verlängerungs-Runden durch, mit allen Reaktionen zur Hexanoyl-Einheit. Danach folgt eine dritte Kondensation ohne die Reduktionsschritte, aber mit einer Methylierung auf der ß-KetoStufe; diese Methylierungs-Domäne (MT) fehlt in DiPKS37. Dieses Intermediat wird dann an die Typ III PKS Domäne übergeben, die zwei zusätzliche Kondensationen durchführt, gefolgt von einer STS-Typ Ringfaltung zu MPBD (4-Methyl-5-Pentylbenzene-1,3-Diol).
DiPKS37 (Steely2): Dies ist so wie früher vorgeschlagen (Austin et al., 2006). In diesem Fall wird die Hexanoyl-Einheit direkt auf die Typ III PKS Domäne übertragen; diese führt drei Kondensationsreaktionen durch, gefolgt von einer CHS-Typ Ringfaltung. Weitere Reaktionen (Halogenase, O-Methylierung) führen zu DIF-1.
Abkürzungen: KS, ß-Ketoacylsynthase; AT, Acyltransferase; DH, Dehydratase; MT, Methyltransferase; ER, Enoylreductase; KR, Ketoreductase; ACP, Acylcarrierprotein; Typ III PKS, CHS-verwandtes Protein.

 

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Zitate

  • Austin, M. B., Saito, T., Bowman, M. E., Haydock, S., Kato, A., Moore, B. S., Kay, R. R., Noel, J. P., 2006. Biosynthesis of Dictyostelium discoideum differentiation-inducing factor by a hybrid type I fatty acid-type III polyketide synthase. Nature Chemical Biology 2, 494-502.
        Differentiation-inducing factors (DIFs) are well known to modulate formation of distinct communal cell types from identical Dictyostelium discoideum amoebas, but DIF biosynthesis remains obscure. We report complimentary in vivo and in vitro experiments identifying one of two approximately 3,000-residue D. discoideum proteins, termed 'steely', as responsible for biosynthesis of the DIF acylphloroglucinol scaffold. Steely proteins possess six catalytic domains homologous to metazoan type I fatty acid synthases (FASs) but feature an iterative type III polyketide synthase (PKS) in place of the expected FAS C-terminal thioesterase used to off load fatty acid products. This new domain arrangement likely facilitates covalent transfer of steely N-terminal acyl products directly to the C-terminal type III PKS active sites, which catalyze both iterative polyketide extension and cyclization. The crystal structure of a steely1 C-terminal domain confirms conservation of the homodimeric type III PKS fold. These findings suggest new bioengineering strategies for expanding the scope of fatty acid and polyketide biosynthesis.
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  • Ghosh, R., Chhabra, A., Phatale, P. A., Samrat, S. K., Sharma, J., Gosain, A., Mohanty, D., Saran, S., Gokhale, R. S., 2008. Dissecting the functional role of polyketide synthases in Dictyostelium discoideum: biosynthesis of the differentiation regulating factor 4-methyl-5-pentylbenzene-1,3-diol. Journal of Biological Chemistry 283, 11348-11354.
        Dictyostelium discoideum
    exhibits the largest repository of polyketide synthase (PKS) proteins of all known genomes. However, the functional relevance of these proteins in the biology of this organism remains largely obscure. On the basis of computational, biochemical, and gene expression studies, we propose that the multifunctional Dictyostelium PKS (DiPKS) protein DiPKS1 could be involved in the biosynthesis of the differentiation regulating factor 4-methyl-5-pentylbenzene-1,3-diol (MPBD). Our cell-free reconstitution studies of a novel acyl carrier protein Type III PKS didomain from DiPKS1 revealed a crucial role of protein-protein interactions in determining the final biosynthetic product. Whereas the Type III PKS domain by itself primarily produces acyl pyrones, the presence of the interacting acyl carrier protein domain modulates the catalytic activity to produce the alkyl resorcinol scaffold of MPBD. Furthermore, we have characterized an O-methyltransferase (OMT12) from Dictyostelium with the capability to modify this resorcinol ring to synthesize a variant of MPBD. We propose that such a modification in vivo could in fact provide subtle variations in biological function and specificity. In addition, we have performed systematic computational analysis of 45 multidomain PKSs, which revealed several unique features in DiPKS proteins. Our studies provide a new perspective in understanding mechanisms by which metabolic diversity could be generated by combining existing functional scaffolds.

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  • Eichinger, L., Pachebat, J. A., Glockner, G., Rajandream, M. A., Sucgang, R., Berriman, M., Song, J., Olsen, R., Szafranski, K., Xu, Q., Tunggal, B., Kummerfeld, S., Madera, M., Konfortov, B. A., Rivero, F., Bankier, A. T., Lehmann, R., Hamlin, N., Davies, R., Gaudet, P., Fey, P., Pilcher, K., Chen, G., Saunders, D., Sodergren, E., Davis, P., Kerhornou, A., Nie, X., Hall, N., Anjard, C., Hemphill, L., Bason, N., Farbrother, P., Desany, B., Just, E., Morio, T., Rost, R., Churcher, C., Cooper, J., Haydock, S., van, D. N., Cronin, A., Goodhead, I., Muzny, D., Mourier, T., Pain, A., Lu, M., Harper, D., Lindsay, R., Hauser, H., James, K., Quiles, M., Madan, B. M., Saito, T., Buchrieser, C., Wardroper, A., Felder, M., Thangavelu, M., Johnson, D., Knights, A., Loulseged, H., Mungall, K., Oliver, K., Price, C., Quail, M. A., Urushihara, H., Hernandez, J., Rabbinowitsch, E., Steffen, D., Sanders, M., Ma, J., Kohara, Y., Sharp, S., Simmonds, M., Spiegler, S., Tivey, A., Sugano, S., White, B., Walker, D., Woodward, J., Winckler, T., Tanaka, Y., Shaulsky, G., Schleicher, M., Weinstock, G., Rosenthal, A., Cox, E. C., Chisholm, R. L., Gibbs, R., Loomis, W. F., Platzer, M., Kay, R. R., Williams, J., Dear, P. H., Noegel, A. A., Barrell, B., Kuspa, A., 2005. The genome of the social amoeba Dictyostelium discoideum. Nature 435, 43-57.
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  • Arai, A., Goto, Y., Hasegawa, A., Hosaka, K., Kikuchi, H., Oshima, Y., Tanaka, S., Kubohara, Y., 2005. Dictyopyrones, novel alpha-pyronoids isolated from Dictyostelium spp., promote stalk cell differentiation in Dictyostelium discoideum. Differentiation 73, 377-384.
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  • Kay, R. R., 1998. The biosynthesis of differentiation-inducing factor, a chlorinated signal molecule regulating Dictyostelium development. Journal of Biological Chemistry 273, 2669-2675.
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  • Kay, R. R., Berks, M., Traynor, D., Taylor, G. W., Masento, M. S., Morris, H. R., 1988. Signals controlling cell differentiation and pattern formation in Dictyostelium. Dev. Genet. 9, 579-587.
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  • Kay, R. R., Large, S., Traynor, D., Nayler, O., 1993. A localized differentiation-inducing-factor sink in the front of the Dictyostelium slug. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 90, 487-491.
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  • Maeda, Y., Kikuchi, H., Sasaki, K., Amagai, A., Sekiya, J., Takaya, Y., Oshima, Y., 2003. Multiple activities of a novel substance, dictyopyrone C isolated from Dictyostelium discoideum, in cellular growth and differentiation. Protoplasma 221, 185-192.
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  • Morris, H. R., Taylor, G. W., Masento, M. S., Jermyn, K. A., Kay, R. R., 1987. Chemical structure of the morphogen differentiation inducing factor from Dictyostelium discoideum. Nature 328, 811-814.
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  • Morris, H. R., Masento, M. S., Taylor, G. W., Jermyn, K. A., Kay, R. R., 1988. Structure elucidation of two differentiation inducing factors (DIF-2 and DIF-3) from the cellular slime mould Dictyostelium discoideum. Biochemical Journal 249, 903-906.
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  • Saito, T., Taylor, G. W., Yang, J. C., Neuhaus, D., Stetsenko, D., Kato, A., Kay, R. R., 2006. Identification of new differentiation inducing factors from Dictyostelium discoideum. Biochimica et Biophysica Acta 1760, 754-761.
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  • Serafimidis, I., Kay, R. R., 2005. New prestalk and prespore inducing signals in Dictyostelium. Developmental Biology 282, 432-441.
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  • Takaya, Y., Kikuchi, H., Terui, Y., Komiya, J., Furukawa, K. I., Seya, K., Motomura, S., Ito, A., Oshima, Y., 2000. Novel acyl alpha-pyronoids, dictyopyrone A, B, and C, from Dictyostelium cellular slime molds. Journal of Organic Chemistry 65, 985-989.
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  • Traynor, D., Kay, R. R., 1991. The DIF-1 signaling system in Dictyostelium. Metabolism of the signal. Journal of Biological Chemistry 266, 5291-5297.
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